Larvicultura de tilápia-do-nilo (Oreochromis niloticus) em sistemas de bioflocos e águas claras: masculinização com 17 α-metiltestosterona
DOI:
https://doi.org/10.20950/1678-2305/bip.2024.50.e872Palavras-chave:
Sistemas fechados, Piscicultura, Desempenho zootécnico, Histologia, Qualidade da águaResumo
Foi avaliado o uso do hormônio 17α-metiltestosterona durante a larvicultura de tilápia-do-nilo em sistemas de bioflocos e águas claras. Adotou-se um delineamento experimental completamente casualizado com quatro tratamentos e quatro repetições: sistema de bioflocos sem incorporação de hormônio na dieta (BFT-D); sistema de bioflocos com incorporação de hormônio na dieta (BFT-H); água clara sem incorporação de hormônio na dieta (CLW-D); e água clara com incorporação de hormônio na dieta (CLW-H). A larvicultura foi realizada por 28 dias utilizando 16 caixas com capacidade de 15 L. A qualidade da água, o crescimento, a sobrevivência e a histologia gonadal foram avaliados. O sistema de bioflocos apresentou valores mais elevados para alcalinidade, sólidos suspensos totais, sólidos em suspensão sedimentáveis e turbidez (p < 0,05), no entanto não foi observada diferença (p > 0,05) no peso final, ganho de peso, fator de conversão alimentar, sobrevivência e taxa de crescimento entre os tratamentos. Desse modo, as pós-larvas de tilápia podem ser criadas com sucesso tanto em sistemas de bioflocos quanto em sistemas de água clara sem nenhum impacto negativo em seu desempenho zootécnico, o que pode aumentar a produção dessa espécie.
Referências
Ahmad, I.; Babitha Rani, A.M.; Verma, A.K.; Maqsood, M. 2017. Biofloc Technology: An Emerging Avenue in Aquatic Animal Healthcare and Nutrition. Aquaculture International, 25: 1215. https://doi.org/10.1007/s10499-016-0108-8
Arai, K.; Fujimoto, T. 2018. Chromosome Manipulation Techniques and Applications to Aquaculture. In: Wang, H.-P.; Piferrer, F.; Chen, S.-L.; Shen, Z.-G. (Eds.). Sex Control in Aquaculture (pp. 137–162). Chichester: John Wiley & Sons. https://doi.org/10.1002/9781119127291.ch6
Asad, F.; Ahmed, I.; Saleem, M.; Iqbal, T. 2010. Hormonal masculinization and growth performance in nile tilapia (Oreochromis niloticus) by androgen administration at different dietary protein levels. International Journal of Agriculture and Biology, 12(6): 939-943.
Avnimelech, Y. 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture, 176(3-4): 227-235. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(99)00085-X
Avnimelech, Y. 2007. Feeding with microbial flocs by tilapia in minimal discharge bio-flocs technology ponds. Aquaculture, 264(1-4): 140-147. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2006.11.025
Avnimelech, Y. 2012. Biofloc technology: A Practical Guide Book. 2ª ed. Baton Rouge: World Aquaculture Society. https://doi.org/10.13140/2.1.4575.0402
Azim, M.E.; Little, D.C. 2008. The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: Water quality, biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture, 283(1-4): 29-35. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.06.036
Baroiller, J.F.; D’Cotta, H. 2018. Sex Control in Tilapias. In: Wang, H.-P.; Piferrer, F.; Chen, S.-L.; Shen, Z.-G. (Eds.). Sex Control in Aquaculture (pp. 191-234). Wiley. https://doi.org/10.1002/9781119127291.ch9
Bombardelli, R.A.; Sanches, E.A.; Pinto, D.F.H.; Marcos, R.M.; Barbero, L. 2007. Idade de maior sensibilidade de tilápiasdo-nilo aos tratamentos de masculinização por banhos de imersão. Revista Brasileira de Zootecnia, 36(1): 1-6. https://doi.org/10.1590/S1516-35982007000100001
Carvalho, E.D.; Foresti, F. 1996. Reversão de sexo em tilápia-do-Nilo Oreochromis niloticus induzida por 17-α-metiltestosterona: proporção de sexo e histologia das gônadas. Brazilian Journal of Biology, 56: 249-262.
Chen, J.; Fan, Z.; Tan, D.; Jiang, D.; Wang, D. 2018. A Review of Genetic Advances Related to Sex Control and Manipulation in Tilapia. Journal of the World Aquaculture Society, 49(2): 277-291. https://doi.org/10.1111/JWAS.12479
Costa e Silva, R.Z.; Alvarenga, É.R.; Matta, S.V.; Alves, G.F. de O.; Manduca, L.G.; Silva, M.A.; Yoshinaga, T.T.; Fernandes, A.F.A.; Turra, E.M. 2022. Masculinization protocol for Nile tilapia (O. niloticus) in Biofloc technology using 17-α-methyltestosterone in the diet. Aquaculture, 547: 737470. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.737470
Cowey, C.B. 1985. Nutrient requirements of warmwater fishes and shellfishes. Aquaculture, 44(3): 257-258. https://doi.org/10.1016/0044-8486(85)90251-0
Crab, R.; Defoirdt, T.; Bossier, P.; Verstraete, W. 2012. Biofloc technology in aquaculture: Beneficial effects and future challenges. Aquaculture, 356-357: 351-356. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2012.04.046
Crab, R.; Kochva, M.; Verstraete, W.; Avnimelech, Y. 2009. Bioflocs technology application in over-wintering of tilapia. Aquacultural Engineering, 40(3): 105-112. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2008.12.004
D’Cotta, H.; Fostier, A.; Guiguen, Y.; Govoroun, M.; Baroiller, J.F. 2001. Aromatase plays a key role during normal and temperature-induced sex differentiation of tilapia Oreochromis niloticus. Molecular Reproduction and Development, 59(3): 265-276. https://doi.org/10.1002/mrd.1031
De Schryver, P.; Crab, R.; Defoirdt, T.; Boon, N.; Verstraete, W. 2008. The basics of bio-flocs technology: The added value for aquaculture. Aquaculture, 277(3-4): 125-137. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.02.019
Eaton, A.; Clesceri, L.; Greenberg, A.; Franson, M. 1995. Standard methods for the examination of water and wastewater. Washington, D.C.: American Public Health Association.
Emerenciano, M.G.C.; Martínez-Córdova, L.R.; Martínez- Porchas, M.; Miranda-Baeza, A. 2017. Biofloc Technology (BFT): A Tool for Water Quality Management in Aquaculture. In: Tutu, H. (ed.). Water Quality. Johannesburg: IntechOpen. https://doi.org/10.5772/66416
Food and Agriculture Organization (FAO). 2022. The State of World Fisheries and Aquaculture 2022: Towards Blue Transformation. Rome: FAO. https://doi.org/10.4060/cc0461en
Furuya, W.; Barros, M. 2012. Exigências nutricionais e alimentação da tilápia. In: Fracalossi, D.M.; Cyrino, J.E.P. (Eds.). Nutriaqua: Nutrição e Alimentação de Espécies de Interesse para a aquicultura brasileira (pp. 255-268). Florianópolis: Sociedade Brasileira de Aquicultura e Biologia Aquática.
Jensi, A.; Karal Marx, K.; Rajkumar, M.; Jeya Shakila, R.; Chidambaram, P. 2016. Effect of 17 α-methyl testosterone on sex reversal and growth of Nile tilapia (Oreochromis niloticus L, 1758). Ecology, Environment and Conservation, 22(3): 1487-1492.
Junqueira, L.C.U.; Junqueira, L.M.S. 1983. Técnicas básicas de citologia e histologia. São Paulo: Santos.
Khanjani, M.H.; Sharifinia, M.; Emerenciano, M.G.C. 2024. Biofloc Technology (BFT) in Aquaculture: What Goes Right, What Goes Wrong? A Scientific-Based Snapshot. Aquaculture Nutrition, 2024: 7496572. https://doi.org/10.1155/2024/7496572
Khanjani, M.H.; Sharifinia, M.; Hajirezaee, S. 2022. Recent progress towards the application of biofloc technology for tilapia farming. Aquaculture, 552: 738021. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2022.738021
Khanjani, M.H.; Sharifinia, M.; Hajirezaee, S. 2023. Biofloc: A sustainable alternative for improving the production of farmed cyprinid species. Aquaculture Reports, 33: 101748. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2023.101748
Khater, E.S.G.; Ali, S.A.; Mohamed, W.E. 2017. Effect of Water Temperature on Masculinization and Growth of Nile Tilapia Fish. Journal of Aquaculture Research & Development, 8:9. https://doi.org/10.4172/2155-9546.1000507
Li, X.Y.; Mei, J.; Ge, C.T.; Liu, X.L.; Gui, J.F. 2022. Sex determination mechanisms and sex control approaches in aquaculture animals. Science China Life Sciences, 65(6): 1091-1122. https://doi.org/10.1007/s11427-021-2075-x
Makino, L.C.; Nakaghi, L.S.O.; do Carmo Faria Paes, M.; Malheiros, E.B.; Dias-Koberstein, T.C.R. 2009. Efetividade de métodos de identificação sexual em tilápias do nilo (Oreochromis niloticus) revertidas sexualmente com hormônio em ração com diferentes granulometrias. Bioscience Journal, 25(2): 112-121.
Mendes, A.I.; Carvalho, M. 2016. Caracterização da piscicultura em tanques-rede no município de Rubinéia-SP: um estudo de caso. Revista do Agronegócio, 5(1): 16-33.
Mlalila, N.; Mahika, C.; Kalombo, L.; Swai, H.; Hilonga, A. 2015. Human food safety and environmental hazards associated with the use of methyltestosterone and other steroids in production of all-male tilapia. Environmental Science and Pollution Research, 22(7): 4922-4931. https://doi.org/10.1007/s11356-015-4133-3
Nakamura, M. 2010. The mechanism of sex determination in vertebrates-are sex steroids the key-factor? Journal of Experimental Zoology Part A: Ecological Genetics and Physiology, 313A(7): 381-398. https://doi.org/10.1002/jez.616
PEIXE BR. 2023. Anuário 2023 Peixe BR de Piscicultura. São Paulo: Associação Brasileira de Piscicultura.
Pérez-Fuentes, J.A.; Hernández-Vergara, M.P.; Pérez-Rostro, C.I.; Fogel, I. 2016. C:N ratios affect nitrogen removal and production of Nile tilapia Oreochromis niloticus raised in a biofloc system under high density cultivation. Aquaculture, 452: 247-251. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2015.11.010
Pezzato, L.E.; De Miranda, E.C.; Barros, M.M.; Pinto, L.G.Q.; Furuya, W.M.; Pezzato, A.C. 2002. Digestibilidade aparente de ingredientes pela tilápia do Nilo (Oreochromis niloticus). Revista Brasileira de Zootecnia, 31(4): 1595-1604. https://doi.org/10.1590/s1516-35982002000700001
Popma, T.; Green, B.W. 1990. Reversão sexual de tilápias em tanques de terra. Florida: University Aurburn.
Popma, T.J.; Lovshin, L.L. 1995. Worldwide Prospects for Commercial Production of Tilapia. Auburn: International Center for Aquaculture and Aquatic Environments.
Schofield, P.J.; Peterson, M.S.; Lowe, M.R.; Brown-Peterson, N.J.; Slack, W.T. 2011. Survival, growth and reproduction of nonindigenous Nile tilapia, Oreochromis niloticus (Linnaeus 1758). I. Physiological capabilities in various temperatures and salinities. Marine and Freshwater Research, 62(5): 439-449. https://doi.org/10.1071/MF10207
Solomon, S.G.; Okomoda, V.T. 2012. Effects of photoperiod on the haematological parameters of Clarias gariepinus fingerlings reared in water recirculatory system. Journal of Stress Physiology & Biochemistry, 8(3): 247-253.
Thanasupsin, S.; Chheang, L.; Math, C. 2021. Ecological risk of 17α-methyltestosterone contaminated water discharged from a full water recirculating earthen masculinization pond. Human and Ecological Risk Assessment, 27(6): 1696-1714. https://doi.org/10.1080/10807039.2021.1871845
Valentin, F.N.; Nascimento, N.F.; Silva, R.C.; Tsuji, E.A.; Carmo Faria Paes, M.; Dias Koberstein, T.C.R.; Nakaghi, L.S.O. 2015. Maternal age influences on reproductive rates in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Revista Brasileira de Zootecnia, 44(4): 161-163. https://doi.org/10.1590/S180692902015000400005
Wang, H.P.; Shen, Z.G. 2018. Sex Control in Aquaculture: Concept to Practice. wiley. In: Wang, H.-P.; Piferrer, F.; Chen, S.-L.; Shen, Z.-G. (Eds.). Sex Control in Aquaculture (pp. 1-34). Oxford: John Wiley & Sons. https://doi.org/10.1002/9781119127291.ch1
Widanarni; Ekasari, J.; Maryam, S.I.T.I. 2012. Evaluation of Biofloc Technology Application on Water Quality and Production Performance of Red Tilapia Oreochromis sp. Cultured at Different Stocking Densities. HAYATI Journal of Biosciences, 19(2): 73-80. https://doi.org/10.4308/hjb.19.2.73
Zanoni, M.A.; Leal, T.V.; Caetano Filho, M.; De Oliveira, C.A.L.; Ribeiro, R.P. 2013. Inversão sexual de alevinos de tilápias do Nilo (Oreochromis niloticus) variedade Supreme, submetidos a diferentes temperaturas durante fase de diferenciação sexual. Semina: Ciências Agrárias, 34(1): 455-466. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2013v34n1p455
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