PROBIÓTICO Bacillus subtilis E Lactobacillus plantarum NA DIETA DE TILÁPIA-DO-NILO
DOI:
https://doi.org/10.20950/1678-2305.2019.45.1.252Palavras-chave:
microbiology, nutrition, production performance, gene expression, fryResumo
Objetivou-se com este trabalho avaliar os efeitos da administração do probiótico composto de Bacillus subtilis e Lactobacillus plantarum em pós-larvas de tilápia-do-nilo, durante a fase de reversão sexual, em condições de estresse pela alta densidade de estocagem. O experimento foi realizado no Instituto de Pesca de São Paulo, e foi inteiramente casualizado com quatro tratamentos e cinco repetições. Sendo: 1) probiótico na ração; 2) probiótico na água; 3) probiótico na ração e água; 4) controle. As variáveis analisadas foram: peso final, comprimento total, taxa de crescimento específico, sobrevivência, microbiologia do trato intestinal e expressão dos genes TNF-α e HSP-70. Os resultados de desempenho zootécnico de crescimento e expressão gênica não apresentaram diferenças significativas entre os tratamentos nos parí¢metros avaliados (P>0,05). No trato intestinal dos alevinos do tratamento com adição de probiótico na água, foi observado log10 (7,72±0,51) UFC, superior í contagem de Bacillus spp. em comparação aos demais tratamentos, e estes não apresentaram diferenças estatísticas entre si. Conclui-se que a adição dos probióticos Bacillus subtilis e Lactobacillus plantarum, na dieta ou na água de criação das pós-larvas de tilápia-do-nilo, durante fase de reversão sexual não causaram melhora no desempenho zootécnico de crescimento e expressão gênica, mas modificou a composição bacteriana intestinal.
Referências
Addo, S.; Carrias, A. A.; Williams, M. A.; Liles, M. R.; Terhune, J. S.; Davis, D. A. 2017. Effects of Bacillus subtilis strains and the prebiotic Previda® on growth, immune parameters and susceptibility to Bacillus subtilis infection in Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Aquaculture Research, 48(9): 4798-4810. https://doi.org/10.1111/are.13300.
Almeida, D. B.; Moreira, H. L. M.; Costa, M. A. P.; Vaz, B. S.; Moreira, C. G. A.; Oliveira, P. A.; Silva, J. C; Tavares, R. A; Bassini, L. N. 2009. Loci de caracteres quantitativos (qtl) em peixes. Arquivos de Ciências Veterinárias e Zoologia da UNIPAR, 12(2): 175-186. https://doi.org/10.25110/arqvet.v12i2.2009.2973.
Araujo, E. P. 2015. Plasma sanguíneo desidratado na alimentação da Tilápia-do- Nilo. São Paulo Brasil. São Paulo 51f. (Dissertação de Mestrado. Universidade Estadual Paulista Julio de Mesquita Filho, Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia). Disponível em :< https://repositorio.unesp.br/handle/11449/132073> Acesso em: 11 jun. 2018.
Carneiro, P. C. F.; Martins, M. I. E. G.; Cyrino, J. E. P. 1999. Estudo de Caso da Criação Comercial de Tilápia Vermelha em Tanques-Rede-Avaliação Econômica. Informações econômicas-governo do estado de São Paulo Instituto de Economia Agrícola, 29, 52-64.
Dahlhoff, E.P. 2004. Biochemical indicators of stress and metabolism: applications formarine ecological studies. Annual Review of Physiology, 66: 183-207. https://doi.org/10.1146/annurev.physiol.66.032102.114509.
Dawood, M. A.; Koshio, S.; Esteban, M. Á. 2017. Beneficial roles of feed additives as immunostimulants in aquaculture: a review. Reviews in Aquaculture. https://doi.org/10.1111/raq.12209.
Dawood, M. A.; Koshio, S.; Ishikawa, M.; Yokoyama, S.; El Basuini, M. F., Hossain, M. S.; Moss, A. S. 2016. Effects of dietary supplementation of Lactobacillus rhamnosus or/and Lactococcus lactis on the growth, gut microbiota and immune responses of red sea bream, Pagrus major. Fish & Shellfish Immunology, 49, 275-285. https://doi.org/10.1111/raq.12209.
Elewaut D.; Didonato Ja.; Kim Jm.; Truong F.; Eckmann L.; Kagnoff Mf. 1999. NF-kB is a central regulator of the intestinal epithelial cell innate immune response induced by infection with entero invasive bacteria. The Journal of Immunology, 163(3): 1457-1466.
Essa M.A.; El-Serafy S.S.; El-Ezabi M.M.; Daboor S.M.; Esmael N.A. 2010. Effect of different dietary probiotics on growth, feed utilization and digestive enzymes activities of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Journal of Arabian Aquaculture Society, 5: 143í 161.
Fagundes, L. C.; Eto, S. F.; Marcusso, P. F.; Fernandes, D. C.; Marinho-Neto, F. A.; Claudiano, G. S.; Salvador, R. 2016. Passive transfer of hyperimmune serum anti Streptococcus agalactiae and its prophylactic effect on Nile tilapia experimentally infected. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 68(2): 379-386. http://dx.doi.org/10.1590/1678-4162-8170.
Farias, W. R. L.; Rebouças, H. J.; Torres, V. M.; Rodrigues, J. A. G.; Pontes, G. C.; SILVA, F. H. O.; Sampaio, A. H. 2004. Enhancement of growth in tilapia fingerlings (Oreochromis niloticus) by sulfated D-galactans extracted from marine algae. Revista Ciência Agronômica, 35, 189-195.
Fink, A.L. 1999. Chaperone - mediated protein folding. Physiological Reviews, 79(2): 425 -449. https://doi.org/10.1152/physrev.1999.79.2.425.
FAO - FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION. 2014. The State of World Fisheries and Aquaculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome 243pp.
Ghazalah, A. A.; Ali, H. M.; Gehad, E. A.; Hammouda, Y. A.; Abo-State, H. A. 2010. Effect of probiotics on performance and nutrients digestibility of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fed low protein diets. Nature and Science, 8(5): 46-53.
Gutierre, S. M. M. 2011. Ferramentas fisiológicas para avaliação do potencial invasor de peixes dulcícolas. Curitiba, Brasil. Curitiba (Dissertação Mestrado. Universidade Federal doParaná,aUFPR).uDisponíveldem:<http://eprints.c3sl.ufpr.br/bitstream/handle/1884/25490/Dissertacao%20%20Silvia%20Maria%20Millan%20Gutierre.pdf?sequence=1&isAllowed=y> Acesso em: 31 mai. 2017.
He, S.; Zhang, Y.; Xu, L.; Yang, Y.; Marubashi, T.; Zhou, Z.; Yao, B. 2013. Effects of dietary Bacillus subtilis C-3102 on the production, intestinal cytokine expression and autochthonous bacteria of hybrid tilapia Oreochromis niloticus ♀í"”Oreochromis aureusââ„¢"š. Aquaculture, 412: 125-130. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2013.06.028.
Hofmann, G.E. 2005. Patterns of HSP gene expression in ectothermic marine organisms on small to large biogeographic scales. Integrative and Comparative Biology, 45(2): 247-255. https://doi.org/10.1093/icb/45.2.247.
Irianto, A.; Austin, B. 2002. Probiotics in aquaculture. Journal of fish diseases, 25(11): 633-642. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.2002.00422.x.
Jatobá, A.; Mourií±o, J.L.P. 2015. Efeito do Lactobacillus plantarum no trato intestinal de alevinos de Oreochromis niloticus. Ciência Animal Brasileira, 16(1): 45-53.
Kesarcodi-Watson, A.; Kaspar, H.; Lategan, M.J.; Gibson, L. 2008. Probiotics in aquaculture: The need, principles and mechanisms of action and screening processes. Aquaculture, 274(1): 1-14. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2007.11.019.
Livak, K.; Schmittgent. 2001. Analysis of relative gene expression data using real time quantitative PCR and 2 -âˆ" âˆ" Ct method. methods, 25(4): 402í 408. https://doi.org/10.1006/meth.2001.1262.
Low, C.; Wadsworth, S.; Burrells, C.; Secombes, C.J. 2003. Expression of immune genes in turbot (Scophthalmus maximus) fed a nucleotide-supplemented diet. Aquaculture, 221(1): 23í 40. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(03)00022-X.
Makridis, P.; Fjellheim, A.J.; Skjermo, J. 2000. Colonization of the gut in first feeding turbot by bacterial strains added to the water or encapsulated in rotifers. Aquaculture International, 8(5): 367-380.
Merrifield, D.L.; Dimitroglou, A.; Foey, A.; Davies, S.J.; Baker, R.; Bí¸gwald, J.; Castex, M.; Ringí¸, E. 2010. The current status and future focus of probiotic and prebiotic applications for salmonids. Aquaculture, 302(1): 1í 18. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2010.02.007.
Meurer, F.; Hayashi, C.; Costa, M.M.; Mauerwerk, V.L.; Freccia, A. 2006. Utilização de Saccharomyces cerevisiae como probiótico para tilápia-do-Nilo durante o período de reversão sexual submetidas a um desafio sanitário. Revista Brasileira de Zootecnia, 35(5): 1881-1886.
Ohkawara, Y.; Yamauchi, K.; Tanno, Y.; Tamura, G.; Ohtani, H.; Nagura, H.; Takishima, T. 1992. Human Lung Mast Cells and Pulmonary Macrophages Produce Tumor Necrosis Factor-a in Sensitized Lung Tissue after 19B Receptor Triggering. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology, 7: 385-392. https://doi.org/10.1165/ajrcmb/7.4.385.
Peixe BR, 2018. Associação Brasileira de Piscicultura. Anuário PeixeBr de Piscicultura 2018, 71p. Disponível em: <http://www.peixebr.com.br> Acesso em 13/06/2018.
Place, S.P.; Hofmann, G.E. 2001. Temperature interactions of the molecular chaperone Hsc70 from the eurythermal marine goby Gillichthys mirabilis. Journal of Experimental Biology, 204(15): 2675-2682.
Ren, P.; Xu, L.; Yang, Y.; He, S.; Liu, W.; Ringí¸, E.; Zhou, Z. 2013. Lactobacillus plantarum subsp. plantarum JCM 1149 vs Bacillus subtilis NJ-1 in the anterior intestine and posterior intestine of hybrid tilapia Oreochromis niloticus♀í"”Oreochromis aureusââ„¢"š. Fish and Shellfish Immunology, 6(34): 1732-1733. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2013.03.295.
Selim, K. M.; Reda, R. M. 2015. Improvement of immunity and disease resistance in the Nile tilapia, Oreochromis niloticus, by dietary supplementation with Bacillus amyloliquefaciens. Fish & shellfish immunology, 44(2): 496-503. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2015.03.004.
Seppola, M.; Larsenan; Steiro, K.; Robertsen, B.; Jensen, I. 2008. Characterisation and expression analysis of the interleukin genes, IL-1b, IL-8 and IL-10, in Atlantic cod (Gadus morhua L.). Molecular Immunology, 45(4): 887-897. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2007.08.003.
Tachibana, L.; Dias, D. C.; Ishikawa, C. M.; Corrêa, C. F.; Leonardo, A. F. G.; Ranzani-Paiva, M. J. T. 2012. Probiótico na alimentação da tilápia-do-Nilo (Oreochromis niloticus Linnaeus, 1758), durante a inversão sexual: desempenho zootécnico e recuperação da bactéria probiótica intestinal. Bioikos-ISSN 0102-9568, 25(1).
Telli, G. S.; Paiva, M. J. T. M.; Dias, D. D. C.; Sussel, F. R.; Ishikawa, C. M.; Tachibana, L. 2014. Dietary administration of Bacillus subtilis on hematology and non-specific immunity of Nile tilapia Oreochromis niloticus raised at different stocking densities. Fish & shellfish immunology, 39(2): 305-311. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2014.05.025.
Thomas, PS. 2001. Tumour necrosis factor-alpha: the role of this multifunctional cytokine in asth ma. Immunology and cell biology, 79(2): 132-140. https://doi.org/10.1046/j.1440-1711.2001.00980.x.
Tine, M.; Bonhomme, F.; Mckenzie, D.J.; Durand, J.D. 2010. Differential expression of the heat shock protein Hsp70 in natural populations of the tilapia, Sarotherodon melanotheron, acclimatised to a range of environmental salinities. BMC ecology, 10(1): 11. https://doi.org/10.1186/1472-6785-10-11.
Tomanek, L. 2008. The importance of physiological limits in determining biogeographical range shifts due to global climate change: the heat shock response. Physiological and Biochemical Zoology, 81(6): 709 í 717. https://doi.org/10.1086/590163.
Tort, L.; Balasch, J.C.; Mackenzie, S. 2003. Fish immune system. A crossroads between innate and adaptive responses. Imunología, 22(3): 277-286.
Zhou, X.; Tian, Z.; Wang, Y.; Li, W. 2010. Effect of treatment with probiotics as water additives on tilapia (Oreochromis niloticus) growth performance and immune response. Fish Physiology and Biochemistry, 36(3): 501-509.
Almeida, D. B.; Moreira, H. L. M.; Costa, M. A. P.; Vaz, B. S.; Moreira, C. G. A.; Oliveira, P. A.; Silva, J. C; Tavares, R. A; Bassini, L. N. 2009. Loci de caracteres quantitativos (qtl) em peixes. Arquivos de Ciências Veterinárias e Zoologia da UNIPAR, 12(2): 175-186. https://doi.org/10.25110/arqvet.v12i2.2009.2973.
Araujo, E. P. 2015. Plasma sanguíneo desidratado na alimentação da Tilápia-do- Nilo. São Paulo Brasil. São Paulo 51f. (Dissertação de Mestrado. Universidade Estadual Paulista Julio de Mesquita Filho, Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia). Disponível em :< https://repositorio.unesp.br/handle/11449/132073> Acesso em: 11 jun. 2018.
Carneiro, P. C. F.; Martins, M. I. E. G.; Cyrino, J. E. P. 1999. Estudo de Caso da Criação Comercial de Tilápia Vermelha em Tanques-Rede-Avaliação Econômica. Informações econômicas-governo do estado de São Paulo Instituto de Economia Agrícola, 29, 52-64.
Dahlhoff, E.P. 2004. Biochemical indicators of stress and metabolism: applications formarine ecological studies. Annual Review of Physiology, 66: 183-207. https://doi.org/10.1146/annurev.physiol.66.032102.114509.
Dawood, M. A.; Koshio, S.; Esteban, M. Á. 2017. Beneficial roles of feed additives as immunostimulants in aquaculture: a review. Reviews in Aquaculture. https://doi.org/10.1111/raq.12209.
Dawood, M. A.; Koshio, S.; Ishikawa, M.; Yokoyama, S.; El Basuini, M. F., Hossain, M. S.; Moss, A. S. 2016. Effects of dietary supplementation of Lactobacillus rhamnosus or/and Lactococcus lactis on the growth, gut microbiota and immune responses of red sea bream, Pagrus major. Fish & Shellfish Immunology, 49, 275-285. https://doi.org/10.1111/raq.12209.
Elewaut D.; Didonato Ja.; Kim Jm.; Truong F.; Eckmann L.; Kagnoff Mf. 1999. NF-kB is a central regulator of the intestinal epithelial cell innate immune response induced by infection with entero invasive bacteria. The Journal of Immunology, 163(3): 1457-1466.
Essa M.A.; El-Serafy S.S.; El-Ezabi M.M.; Daboor S.M.; Esmael N.A. 2010. Effect of different dietary probiotics on growth, feed utilization and digestive enzymes activities of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Journal of Arabian Aquaculture Society, 5: 143í 161.
Fagundes, L. C.; Eto, S. F.; Marcusso, P. F.; Fernandes, D. C.; Marinho-Neto, F. A.; Claudiano, G. S.; Salvador, R. 2016. Passive transfer of hyperimmune serum anti Streptococcus agalactiae and its prophylactic effect on Nile tilapia experimentally infected. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 68(2): 379-386. http://dx.doi.org/10.1590/1678-4162-8170.
Farias, W. R. L.; Rebouças, H. J.; Torres, V. M.; Rodrigues, J. A. G.; Pontes, G. C.; SILVA, F. H. O.; Sampaio, A. H. 2004. Enhancement of growth in tilapia fingerlings (Oreochromis niloticus) by sulfated D-galactans extracted from marine algae. Revista Ciência Agronômica, 35, 189-195.
Fink, A.L. 1999. Chaperone - mediated protein folding. Physiological Reviews, 79(2): 425 -449. https://doi.org/10.1152/physrev.1999.79.2.425.
FAO - FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION. 2014. The State of World Fisheries and Aquaculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome 243pp.
Ghazalah, A. A.; Ali, H. M.; Gehad, E. A.; Hammouda, Y. A.; Abo-State, H. A. 2010. Effect of probiotics on performance and nutrients digestibility of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fed low protein diets. Nature and Science, 8(5): 46-53.
Gutierre, S. M. M. 2011. Ferramentas fisiológicas para avaliação do potencial invasor de peixes dulcícolas. Curitiba, Brasil. Curitiba (Dissertação Mestrado. Universidade Federal doParaná,aUFPR).uDisponíveldem:<http://eprints.c3sl.ufpr.br/bitstream/handle/1884/25490/Dissertacao%20%20Silvia%20Maria%20Millan%20Gutierre.pdf?sequence=1&isAllowed=y> Acesso em: 31 mai. 2017.
He, S.; Zhang, Y.; Xu, L.; Yang, Y.; Marubashi, T.; Zhou, Z.; Yao, B. 2013. Effects of dietary Bacillus subtilis C-3102 on the production, intestinal cytokine expression and autochthonous bacteria of hybrid tilapia Oreochromis niloticus ♀í"”Oreochromis aureusââ„¢"š. Aquaculture, 412: 125-130. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2013.06.028.
Hofmann, G.E. 2005. Patterns of HSP gene expression in ectothermic marine organisms on small to large biogeographic scales. Integrative and Comparative Biology, 45(2): 247-255. https://doi.org/10.1093/icb/45.2.247.
Irianto, A.; Austin, B. 2002. Probiotics in aquaculture. Journal of fish diseases, 25(11): 633-642. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.2002.00422.x.
Jatobá, A.; Mourií±o, J.L.P. 2015. Efeito do Lactobacillus plantarum no trato intestinal de alevinos de Oreochromis niloticus. Ciência Animal Brasileira, 16(1): 45-53.
Kesarcodi-Watson, A.; Kaspar, H.; Lategan, M.J.; Gibson, L. 2008. Probiotics in aquaculture: The need, principles and mechanisms of action and screening processes. Aquaculture, 274(1): 1-14. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2007.11.019.
Livak, K.; Schmittgent. 2001. Analysis of relative gene expression data using real time quantitative PCR and 2 -âˆ" âˆ" Ct method. methods, 25(4): 402í 408. https://doi.org/10.1006/meth.2001.1262.
Low, C.; Wadsworth, S.; Burrells, C.; Secombes, C.J. 2003. Expression of immune genes in turbot (Scophthalmus maximus) fed a nucleotide-supplemented diet. Aquaculture, 221(1): 23í 40. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(03)00022-X.
Makridis, P.; Fjellheim, A.J.; Skjermo, J. 2000. Colonization of the gut in first feeding turbot by bacterial strains added to the water or encapsulated in rotifers. Aquaculture International, 8(5): 367-380.
Merrifield, D.L.; Dimitroglou, A.; Foey, A.; Davies, S.J.; Baker, R.; Bí¸gwald, J.; Castex, M.; Ringí¸, E. 2010. The current status and future focus of probiotic and prebiotic applications for salmonids. Aquaculture, 302(1): 1í 18. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2010.02.007.
Meurer, F.; Hayashi, C.; Costa, M.M.; Mauerwerk, V.L.; Freccia, A. 2006. Utilização de Saccharomyces cerevisiae como probiótico para tilápia-do-Nilo durante o período de reversão sexual submetidas a um desafio sanitário. Revista Brasileira de Zootecnia, 35(5): 1881-1886.
Ohkawara, Y.; Yamauchi, K.; Tanno, Y.; Tamura, G.; Ohtani, H.; Nagura, H.; Takishima, T. 1992. Human Lung Mast Cells and Pulmonary Macrophages Produce Tumor Necrosis Factor-a in Sensitized Lung Tissue after 19B Receptor Triggering. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology, 7: 385-392. https://doi.org/10.1165/ajrcmb/7.4.385.
Peixe BR, 2018. Associação Brasileira de Piscicultura. Anuário PeixeBr de Piscicultura 2018, 71p. Disponível em: <http://www.peixebr.com.br> Acesso em 13/06/2018.
Place, S.P.; Hofmann, G.E. 2001. Temperature interactions of the molecular chaperone Hsc70 from the eurythermal marine goby Gillichthys mirabilis. Journal of Experimental Biology, 204(15): 2675-2682.
Ren, P.; Xu, L.; Yang, Y.; He, S.; Liu, W.; Ringí¸, E.; Zhou, Z. 2013. Lactobacillus plantarum subsp. plantarum JCM 1149 vs Bacillus subtilis NJ-1 in the anterior intestine and posterior intestine of hybrid tilapia Oreochromis niloticus♀í"”Oreochromis aureusââ„¢"š. Fish and Shellfish Immunology, 6(34): 1732-1733. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2013.03.295.
Selim, K. M.; Reda, R. M. 2015. Improvement of immunity and disease resistance in the Nile tilapia, Oreochromis niloticus, by dietary supplementation with Bacillus amyloliquefaciens. Fish & shellfish immunology, 44(2): 496-503. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2015.03.004.
Seppola, M.; Larsenan; Steiro, K.; Robertsen, B.; Jensen, I. 2008. Characterisation and expression analysis of the interleukin genes, IL-1b, IL-8 and IL-10, in Atlantic cod (Gadus morhua L.). Molecular Immunology, 45(4): 887-897. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2007.08.003.
Tachibana, L.; Dias, D. C.; Ishikawa, C. M.; Corrêa, C. F.; Leonardo, A. F. G.; Ranzani-Paiva, M. J. T. 2012. Probiótico na alimentação da tilápia-do-Nilo (Oreochromis niloticus Linnaeus, 1758), durante a inversão sexual: desempenho zootécnico e recuperação da bactéria probiótica intestinal. Bioikos-ISSN 0102-9568, 25(1).
Telli, G. S.; Paiva, M. J. T. M.; Dias, D. D. C.; Sussel, F. R.; Ishikawa, C. M.; Tachibana, L. 2014. Dietary administration of Bacillus subtilis on hematology and non-specific immunity of Nile tilapia Oreochromis niloticus raised at different stocking densities. Fish & shellfish immunology, 39(2): 305-311. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2014.05.025.
Thomas, PS. 2001. Tumour necrosis factor-alpha: the role of this multifunctional cytokine in asth ma. Immunology and cell biology, 79(2): 132-140. https://doi.org/10.1046/j.1440-1711.2001.00980.x.
Tine, M.; Bonhomme, F.; Mckenzie, D.J.; Durand, J.D. 2010. Differential expression of the heat shock protein Hsp70 in natural populations of the tilapia, Sarotherodon melanotheron, acclimatised to a range of environmental salinities. BMC ecology, 10(1): 11. https://doi.org/10.1186/1472-6785-10-11.
Tomanek, L. 2008. The importance of physiological limits in determining biogeographical range shifts due to global climate change: the heat shock response. Physiological and Biochemical Zoology, 81(6): 709 í 717. https://doi.org/10.1086/590163.
Tort, L.; Balasch, J.C.; Mackenzie, S. 2003. Fish immune system. A crossroads between innate and adaptive responses. Imunología, 22(3): 277-286.
Zhou, X.; Tian, Z.; Wang, Y.; Li, W. 2010. Effect of treatment with probiotics as water additives on tilapia (Oreochromis niloticus) growth performance and immune response. Fish Physiology and Biochemistry, 36(3): 501-509.
Downloads
Publicado
2019-01-22
Edição
Seção
Artigo científico
