Refrigeração do sêmen do ariocó Lutjanus synagris

Autores

  • Eduardo Gomes SANCHES Pesquisador Cientí­­fico, Mestre. Núcleo de Pesquisa e Desenvolvimento do Litoral Norte, Instituto de Pesca/APTA/SAA
  • Vinicius Ronzani CERQUEIRA Professor Titular. Laboratório de Piscicultura Marinha, Departamento de Aquicultura, Universidade Federal de Santa Catarina

Palavras-chave:

refrigeração do sêmen, reprodução, maricultura

Resumo

Este trabalho teve a finalidade de desenvolver um protocolo de refrigeração do sêmen do ariocó Lutjanus synagris. Primeiramente, a taxa de motilidade, a duração da motilidade, a concentração espermática e o espermatócrito foram avaliados para caracterizar a qualidade do sêmen fresco. Para os testes de refrigeração a 4°C, três diferentes diluentes com diferentes composições iônicas e distintos valores de pH foram testados em atmosfera normal e atmosfera modificada (100% oxigênio). Posteriormente, um teste de fertilização foi realizado para avaliar a viabilidade do sêmen refrigerado. Os resultados demonstraram que o sêmen fresco tem uma concentração espermática de 2,2 ± 0,2 x 109 células mL-1, motilidade superior a 90% e permanece móvel por 137 ± 20 segundos. Uma relação positiva foi encontrada entre espermatócrito e concentração espermática (r2 = 0,75; P<0,05). No experimento de refrigeração, a taxa de motilidade e a duração da motilidade foram mantidas adequadas durante 72 horas para os diluentes A (63 ± 6%; 274 ± 44 segundos) e B (63 ± 6%; 172 ± 7 segundos) em atmosfera normal. Na atmosfera modificada, a qualidade do sêmen caiu drasticamente durante as primeiras 24 horas, independentemente do diluente utilizado, não propiciando vantagem em sua utilização. Os resultados demonstraram que a refrigeração do sêmen do ariocó é uma alternativa viável, sendo possí­­vel manter por até 48 horas uma apropriada qualidade espermática, proporcionando assim uma taxa de fertilização superior a 50%.

Referências

AGARWAL, N.K. e RAGHUVANSHI, S.K. 2009 Spermatocrit and sperm density in snowtrout (Schizothorax richardsonii): correlation and variation during the breeding season.Aquaculture, Amsterdam, 291(4): 61-64.

ALAVI, S.M.H.; COSSON, J.; KARAMI, M.; AMIRI, B.M. 2004 Spermatozoa motility in the
Persian sturgeon: effects of pH, dilution rate, ions and osmolality. Reproduction Research,Baton Rouge, 128(1): 819-828.

BENCIC, D.C.; KRISFALUSI, M.; CLOUD, J.G.; INGERMANN, R.L. 2000 Short-term storage of salmonid sperm in air versus oxygen. North American Journal of Aquaculture, New York,62(1): 19-25.

BILLARD, R.; COSSON, S.B.; NOVIERI M.;POURKAZEMI, M. 2004 Cryopreservation
and short-term storage of sturgeon: a review.Aquaculture, Amsterdam, 236(1): 1-9.

CARNEIRO, P.C.F; SEGUI, M.S.; IÓRIS FILHO,C.R.; MIKOS, J.D. 2006 Viabilidade do sêmen de jundiá, Rhamdia quelen armazenado sob refrigeração. Revista Acadêmica, Belo Horizonte, 4(3): 11-16.

CHEREGUINI, O.; CAL, R.M.; DREANNO, C.; BAULNY, B.O.; SUQUET, M.; MAISSE, G.
1997 Short-term storage and cryopreservation of turbot (Scophthalmus maximus) sperm.Aquatic Living Resources, Paris, 10: 251-255.

CHEREGUINI, O.; BANDA, I.G. DE LA; RASINES,I.; FERNANDEZ, A. 2001 Larval growth of turbot, Scophthalmus maximus (L.) produced with fresh and cryopreserved sperm. Aquaculture Reserch, Oxford, 32(1): 133-143.

CLARO, R. e LINDEMAN, K.C. 2008 Biologí­­a y manejo de los pargos (Lutjanidae) en el Atlántico occidental. Havana: Instituto de Oceanologí­­a/CITMA. 472 p.

CRUZ-CASALLAS, P.E.; VELASCOSANTAMARIA, Y.M.; MEDINA-ROBLES,V.M. 2006 Determinación del espermatocrito y efecto del volumen de la dosis seminante
sobre la fertilidad en yamú (Brycon amazonicus). Revista Colombiana de Ciencias
Pecuarias, Bogotá, 19(2): 140-145.

DILAURO, M.N., KRISE, W.F., HENDRIX, M.A., BAKER, S.E. 1994 Short term storage of
Atlantic sturgeon sperm. The Progressive FishCulturist, New York, 56(1): 143-144.

FIGUEIREDO, J.L. e MENEZES, N.A. 2000 Manual de peixes marinhos do Sudeste do Brasil. São Paulo: Museu de Zoologia/USP. 116p.

GARZÓN, D.L.; PEí­"˜ARANDA, D.S.; PÉREZ, L.;MARCO-JIMÉNEZ, F.; ESPERT, X.; Mí­Å“LLER
T.; JOVER, M.; ASTURIANO, J.F. 2008 Effects of pH, sodium bicarbonate, cryoprotectants and foetal bovine serum on the cryopreservation of european eel sperm.Reproduction in Domestic Animals, Madri, 43:99-105.

GODINHO, H.P. 2000 Criopreservação de sêmen de peixes. Informe Agropecuário, Belo Horizonte, 21(3): 16-20.

GWO, J.C. 2000 Cryopreservation of sperm of some marine fishes. In: TIERSCH, T.R. e
MAZIK, P.M. Cryopreservation in Aquatic Species. Baton Rouge: World Aquaculture
Society. p.138-160.

INABA, K. 2003 Molecular architecture of the sperm flagella: molecules for motility and signaling. Zoological Science, Londres, 20: 1043-1056.

KLIPPEL, S. e PERES, M.B. 2002 Resultados da avaliação de estoques das dez principais espécies na pesca de linha de mão da costa central do Brasil. Rio Grande:Programa REVIZEE. 60p.

LAHNSTEINER, F., WEISMANN, T.; PATZNER,R.A. 1997 Methanol as cryoprotectant and the suitability of 1,2ml and 5ml strans for cryopreservation of semen from salmonid
fishes. Aquaculture Research, Oxford, 28(2):471-479.

LANES, C.F.C.; OKAMOTO, M.; CAVALCANTI,P.V.; COLARES, T.; CAMPOS, V.F.;
DESCHAMPS, J.C.; ROBALDO, R.B.; MARINS, L.F.; SAMPAIO, L.A. 2008 Cryopreservation of Brazilian flounder (Paralichthys orbignyanus) sperm. Aquaculture,Amsterdam, 275(1): 361-365.

MARQUES, S. e GODINHO, H.P. 2004 Short-term cold storage of sperm from six tropical characiformes fishes. Brazialian Archives of Biology and Technology, Maringá, 47(5): 799-804.

MUCHLISIN, Z.A. 2005 Current Status of Extenders and cryoprotectants on fish
spermatozoa cryopreservation. Biodiversitas,Halamn, 6(1): 66-69.

ORFÃO, L.H.; MARIA, A.N.; NASCIMENTO,A.F.; ISAí­Å¡, Z.A.; VIVEIROS, A.T.M. 2010
Sperm fertility of the subtropical freshwater streaked prochilod Prochilodus lineatus
Characiformes) improved after dilution and cold storage. Aquaculture Research, Oxford, 41:679-687.

ODA, S. e MORISAWA, M. 1993 Rises of intracellular Ca+ and pH mediate the
initiation of sperm of farmed european eel Anguilla anguilla. Journal of World Aquaculture Society, Baton Rouge, 35: 240-246.

OLIVEIRA, A.V.; VIVEIROS, A.T.M.; MARIA, A.N. FREITAS, R.T.F.; IZAí­Å¡, Z.A. 2007
Sucesso do resfriamento e congelamento do sêmen de pirapitinga Brycon nattereri. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia,Belo Horizonte, 59(6): 1509-1515.

PEí­"˜ARANDA, D.S.; PÉREZ, L.; GALLEGO, V.;BARRERA, R.; JOVER, M.; ASTURIANO, J.F.
2010 European eel sperm diluent for shortterm storage. Reproduction in Domestic
Animals, Madri, 45: 407-415.

REZENDE, S.M.; FERREIRA, B.P.; FREDOU, T.2003 A pesca de lutjaní­­deos no nordeste do Brasil: histórico das pescarias, caracterí­­sticas das espécies e releví­¢ncia para o manejo. Boletim Técnico Cientifico do CEPENE, Recife,11: 1-17.

RILEY, K.L.; HOLLADAY, C.G.; CHESNEY, E.J.; TIERSCH, T.R. 2004 Cryopreservation of
sperm of red snapper Lutjanus campechanus. Aquaculture, Amsterdam, 238(1): 183-194.

RITAR, A.J. e CAMPET, M. 2000 Sperm survival during short-term storage and after
cryopreservation of semen from striped trupeter (Latris lineata). Theriogenology,
Amsterdam, 54(1): 467-480.

SAAD, A.; BILLARD, R.; THERON, M.C.;HOLLEBECQ, M.G. 1988 Short-term preservation of carp (Cyprinus carpio) semen. Aquaculture, Amsterdam, 71(1): 133-150.

SANCHES, E.G.; HENRIQUES, M.B.;FAGUNDES, L.; SILVA, A.A. 2006 Viabilidade econômica do cultivo da garoupa verdadeira (Epinephelus marginatus) em tanques-rede, região sudeste do Brasil.Informações Econômicas, São Paulo, 36(8): 15-25.

SANCHES, E.G. 2007 Piscicultura marinha no Brasil: uma alternativa de produção e
conservação. Aquicultura e Pesca, São Paulo,36: 16-22.

SANCHES, E.G.; OLIVEIRA, I.R.;SERRALHEIRO, P.C. 2009 Crioconservação do sêmen da garoupa-verdadera Epinephelus marginatus (Lowe, 1834) (Teleostei,Serranidae). Boletim do Instituto de Pesca, São Paulo, 35(3): 389-399.

SAS INSTITUTE INC. 1990 SAS technical report.Release 6.11. Cary: NC. 229p.

STOSS, J. 1983 Fish gamete preservation and spermatozoan physiology. In: HOAR, W.S.; RANDALL, D.J.; DONALDSON, E.M. (Eds.).Fish physiology. New York: Academic Press.p.305-350.

SUQUET, M., DREANNO, C.; FAUVEL, C.,COSSON, J.; BILLARD, R. 2000
Cryopreservation of sperm in marine fish.Aquaculture Research, Oxford, 31(1): 231-243.

TANAKA, S.; ZHANG, H.; YAMADA, Y.;OKAMURA, A.; HORIE, N.; UTOH, T.,
MIKAWA, N.; OKA, H.P.; KUROKURA, H. 2002 Inibitory effect of sodium bicarbonate on the motility of sperm of Japanese eel. Journal of Fish Biology, Londres, 60: 139-146.

TIBA, R.M.; OLIVEIRA, I.R.; SERRALHEIRO,P.C.S.; OSTINI, S. 2009 Diluentes e proporções sêmen:diluente na crioconservação do sêmen do robalo-peva Centropomus parallelus. Boletim do Instituto de Pesca, São Paulo, 35(1): 99-110.

TIERSCH, T.R.; WAYMAN, W.R.; SKAPURA,D.P.; NEIDIG, C.L.; GRIER, H.J. 2004
Transport and cryopreservation of sperm of the common snook, Centropomus undecimalis (Block). Aquaculture Research, Oxford, 35(1):278-288.

VUTHIPHANDCHAI, V.; CHOMPHUTHAWACH,S.; NIMRAT, S. 2009 Cryopreservation of red snapper Lutjanus argentimaculatus sperm:effect of cryoprotectants and cooling rates on sperm motility, sperm viability and fertilization capacity. Theriogenology,
Amsterdam, 72(1): 129-138.

WAYMAN, W.R.; THOMAS, R.G. TIERSCH, T.R.1997 Refrigerated storage and
cryopreservation of black drum Pogonias cromis spermatozoa. Theriogenology,
Amsterdam, 47(1): 1519-1529.

WAYMAN, W.R. e TIERSCH, T.R. 1998 Refrigerated storage and cryopreservation of
sperm of red drum, Sciaenops ocellatus L. Aquaculture Research, Oxford, 29(1): 267-273.

ZAR, J.H. 1999 Biostatistical analysis. USA: Ed.Prentice Hall. 929 p.

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Publicado

2018-11-08

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Seção

Artigo cientí­fico

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