Suplementação de selênio na dieta alimentar de jundiá

Autores

  • Maria Shimelly Soares ROCHA Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal, Universidade Federal do Pampa
  • Robson Luiz PUNTEL Programa de Pós-Graduação em Bioquí­­mica, Universidade Federal do Pampa http://orcid.org/0000-0001-9047-2906
  • Paulo Rodinei Soares LOPES Núcleo de Aquacultura (NAQUA), Universidade Federal do Pampa
  • Márcio Aquio HOSHIBA Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal, Universidade Federal do Pampa
  • Larissa da CUNHA Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal, Universidade Federal do Pampa
  • Alessandra Sayuri Kikuchi TAMAJUSUKU NUPILABRU e AQUAPAMPA, Curso Superior de Tecnologia em Aquicultura, Universidade Federal do Pampa

DOI:

https://doi.org/10.20950/1678-2305.2017v43n1p14

Palavras-chave:

disseleneto de difenila, estresse oxidativo, nutrição, peixe, Rhamdia quelen

Resumo

O estudo objetivou avaliar os efeitos antioxidantes da suplementação de disseleneto de difenila na concentração de 3,0 ppm na dieta alimentar de jundiás (Rhamdia quelen). Para isso, 80 peixes foram distribuí­­dos em oito unidades experimentais compostas por oito caixas d’água. Dois grupos de peixes foram constituí­­dos, sendo denominados: T1 í  Grupo controle e T2 í  Grupo tratado com ração aditivada com selênio, com quatro réplicas de cada tratamento. Foram avaliadas as atividades especí­­ficas das enzimas Superóxido Dismutase (SOD) e Catalase (CAT) no tecido hepático; os ní­­veis de Peroxidação Lipí­­dica (Ní­­veis de TBARS) nos tecidos musculares e hepáticos; e a toxicidade do selênio através do teste de Micronúcleo Pí­­sceo (MN). A adição de disseleneto de difenila não alterou significativamente o crescimento dos animais, nem as atividades enzimáticas da SOD e da CAT ou, ainda, os ní­­veis de TBARS. A concentração testada não se mostrou tóxica para os animais, como evidenciado pelo teste da contagem de micronúcleos.

Referências

AEBI, H. 1984 Catalase in vitro. Methods in Enzymology,105: 121-126. doi: 10.1016/S0076-6879(84)05016-3.[on line] URL: <http://www.sciencedirect.com/>

ATENCIO, L.; MORENO, I.; JOS, Á.; PRIETO, A. I.; MOYANO, R.; BLANCO, A.; CAMEÁN, A. M. 2009
Effects of dietary selenium on the oxidative stress and pathological changes in tilapia (Oreochromis niloticus) exposed to a microcystin-producing cyanobacterial water bloom. Toxicon, 53(2): 269-282.

BOMBAIL, V.; GORDON, E.; BATTY, J. 2001 Application of the comet and micronucleus assays to butterfish (Pholis gunnellus) erythrocytes from the Firth of Forth, Scotland. Chemosphere, 44(3): 383-392.

BRADFORD, M.M.A. 1976 A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram
quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72(1-
2): 248-254.

HAMILTON, S.J. 2004 Review of selenium toxicity in the aquatic food chain. Science of the Total
Environment, 326(1-3): 1-31.

HEDDLE, J.A. 1973 A rapid in vivo test for chromosomal damage. Mutation Research, 18(2): 187-190.

MISRA, H.P.; FRIDOVICH, L. 1972 The role of superoxide anion in the autoxidation of epinephrine
and a simple assay for superoxide dismutase. Journal of Biological Chemistry, 247(10): 3170-3175.

MONTEIRO, D.A.; RANTIN, F.T.; KALININ, A.L. 2007 Uso do selênio na dieta de matrinxã, Brycon
cephalus. Revista Brasileira de Saúde e Produção Animal, 8(1): 32-47.

MONTEIRO, D.A.; RANTIN, F.T.; KALININ, A.L. 2009 The effects of selenium on oxidative stress
biomarkers in the freshwater characid fish matrinxã, Brycon cephalus (Günther, 1869) exposed
to organophosphate insecticide Folisuper 600 BR® (methyl parathion). Comparative Biochemistry and Physiology - Part C: Toxicology & Pharmacology,149(1): 40í 49.

NAVARRO, R.D.; LANNA, E.A.T.; DONZELE, J.;MATTA, S.L.P.; SOUZA. M.A. 2007 Ní­­veis de
energia digestí­­vel da dieta sobre o desempenho de piauçu (Leporinus macrocephalus) em fase pós-larval. Acta Scientiarum Animal Sciences, 29(1): 109-114.

OHKAWA, H.; OHISHI, N.; YAGI, K. 1979 Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric
acid reaction. Analytical Biochemistry, 95(2): 351-358.

PEREIRA, T.S.; FABREGAT, T.E.H.P.; FERNANDES,J.B.K.; BOSCOLO, C. N.; CASTILLO, J.D.A.; KOBERSTEIN, T.C.R.D. 2009 Selênio orgí­¢nico na alimentação de matrizes de tilápia-do-Nilo
(Oreochromis niloticus). Acta Scientiarum Animal Sciences, 31(4): 433-437.

PIEDRAS, S.R.N.; MORAE, P.R.R.; ISOLDI, L. A.;POUEY, J.L.O.F.; RUTZ, F. 2005 Comparação entre
o selênio orgí­¢nico e o inorgí­¢nico empregados na dieta de alevinos de jundiá (Rhamdia quelen).
Boletim do Instituto de Pesca, 31(2): 171-174.

SCHMID, W. 1975 The micronucleus test. Mutation Research, 31(1): 9-15.

SOARES, A.F.; FARINA, M.; Bí­–ETTCHER, A.C.; BRAGA, A.L.; BATISTA, T.R.J. 2005 Organic and inorganic forms of selenium inhibited differently fish (Rhamdia quelen) and rat (Rattus
norvergicus albinus) δ-aminolevulinate dehydratase. Environmental research, 98(1): 46-54.

VIDAL, D.; BAY, S.M.; SCHLENK, D. 2005 Effects of dietary selenomethionine on larval rainbow trout(Oncorhynchus mykiss). Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 49(1): 71í 75.

Downloads

Publicado

2017-03-21

Edição

Seção

Artigo cientí­fico

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)