FONTES DE LIPÍDIOS EM DIETAS PARA JUVENIS DE JUNDIÁ (Rhamdia quelen)

Autores

  • Ricácio Luan Marques GOMES Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho”, Centro de Aquicultura da UNESP
  • Evandro Bilha MORO Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho”, Centro de Aquicultura da UNESP http://orcid.org/0000-0001-7763-101X
  • Bruno dos Santos SOSA Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho”, Centro de Aquicultura da UNESP
  • Danielle Zanerato DAMASCENO Engenheira de Pesca, Raguife Raç-­µes http://orcid.org/0000-0001-6654-093X
  • Mariana Lins RODRIGUES Universidade Estadual do Oeste do Paraná
  • Fabio BITTENCOURT Universidade Estadual do Oeste do Paraná http://orcid.org/0000-0001-5894-7158

DOI:

https://doi.org/10.20950/1678-2305.2019.45.2.465

Palavras-chave:

í­Âcidos graxos, aquicultura, nutrição de peixes, Rhamdia quelen

Resumo

O objetivo do presente estudo foi avaliar diferentes fontes lipí­­dicas em dietas para juvenis de jundiá sobre o aspecto do desempenho produtivo, composição centesimal, histologia hepática, respostas bioquí­­micas e estresse oxidativo. Foram utilizados 300 juvenis com peso médio inicial de 18,45 ± 1,22g, distribuí­­dos em 20 tanques-rede de 1m3, dispostos em um tanque de alvenaria de 200 m2, por um perí­­odo de 90 dias. As dietas experimentais foram isoproteicas (29,05% de proteí­­na digestí­­vel) e isoenergéticas (3.250 kcal.kg-1), contendo diferentes fontes de óleos em sua composição: soja, girassol, peixe, canola e oliva na concentração de 3,0%. Os animais foram distribuí­­dos em um delineamento inteiramente aleatório, com cinco tratamentos e quatro repetições. Os dados foram submetidos a ANOVA, e quando significativa as médias foram comparadas por Tukey a 5% de significí­¢ncia.  O í­­ndice de gordura visceral foi maior para os peixes alimentados com dietas contendo óleo de girassol (P<0,05). Não foram observadas diferenças (P>0,05) para as variáveis de desempenho produtivo, composição centesimal e bioquí­­mica sanguí­­nea. Foi observado diferença (P<0,05) na histologia hepática, onde o tratamento com óleo de soja apresentou maior número de hepatócitos. Os animais alimentados com óleo de peixe apresentaram uma maior peroxidação lipí­­dica TBARS e maior atividade da enzima GST (P<0,05). Portanto, as diferentes fontes lipí­­dicas podem ser utilizadas na alimentação desta espécie sem que ocorram prejuí­­zos sobre o desempenho produtivo. Não se recomenda a inclusão de óleo de girassol, devido ao mesmo proporcionar uma maior deposição de gordura visceral.

Referências

AOAC í  Association of Official Analytical Chemist. 2005. Official methods of analysis of analyses of the Association Analytical Chemists.18ª ed. Gaithersburg, Maryland.

Baldisserotto, B.; Radünz neto, J. 2004.Criação de Jundiá. Santa Maria: Editora UFSM, 232p.

Barbieri, E.; Campos-Garcia, J.; Martinez, D.S.T.; Alves, O.L.; Rezende, K.F.O. 2016. Histopathological effects on gills of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus, Linnaeus, 1758) Exposed to Pb and Carbon Nanotubes. Microscopy and Microanalysis, 22(6): 1162-1169.

Barros, A.F. 2010. Análise sócio econômica e zootécnica da piscicultura na microrregião da baixada Cuiabana í  MT. Tese (Doutorado em aquicultura) Centro de Aquicultura da UNESP í  CAUNESP, Jaboticabal, SP, 129f.

Bertechini, A.G. 2013. Nutrição de monogástricos. Lavras: Editora UFLA, 373p.

Bolla, S.; Nicolaisen, O.; Amim, A. 2011.Liver alterations induced by long term feeding on comercial diets in Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus L.) females. Histological and biochemical aspects. Aquaculture, 312: 117-125. http://dx.doi.org/j.aquaculture.2010.12.019.

Bombardelli, R.A.; Hayashi, C.; Natali, M.R.M.; Sanches, E.A.; Piana, P.A. 2009. Desempenho reprodutivo e zootécnico e deposição de lipí­­dios nos hepatócitos de fêmeas de tilápia-do-nilo alimentadas com rações de diversos ní­­veis energéticos. Revista Brasileira de Zootecnia, 38(8): 1391-1399.

Borges, A.; Scotti, L.V.; Siqueira, D.R.; Jurinitz, D.F.; Wassermann, G.F. 2004. Hematologic and serum biochemical values for jundiá (Rhamdia quelen). Fish Physiology and Biochemistry, 30: 21-25.

Bosisio, F.; Rezende, K.F.O.; Barbieri, E. 2017. Alterations in the hematological parameters of Juvenile Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) submitted to different salinities. Pan-American Journal of Aquatic Sciences, 12(2): 146-154.

Brancroft, J.D.; Gramble, M. 2002. Theory and practice of histological techiniques. New York: Churchill Livingstone, 796p.

Bruslé, J.; Anadon, G.G. 1996. "The structure and function of fish liver”. In Fish
Morphology, Science Publishers, pp 77-93.

Buege, J.A.; Aust, S.D. 1978. Microsomal lipid peroxidation, Methods in Enzymology, 52: 302-309. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(78)52032-6.

Caballero, M.J.; López-Calero, G.; Socorro, J.; Roo, F.J.; Izquierdo, M.S.; Férnandez, A.J. 1999. Combined effect of lipid level and fish meal quality on liver histology of gilthead seabream (Sparus aurata). Aquaculture, 179: 277-290.

Caballero, M.J.; Lopez-Calero, G; Socorro, J.; Roo, F.J.; Izquierdo, M.S.; Fernandez, A.J. 2004. Histological alterations in the liver of sea bream, Sparus aurata L., caused by short- or long-term feeding with vegetabe oils. Recovery of normal morphology after feeding fish oil as the sole lipid source. Journal of Fish Diseases, 27: 531-541.

Carneiro, P.C.F.; Bendhack, F. Mikos, J.D. 2003.Processamento: o jundiá como matéria prima. Panorama da Aquicultura, 13: 17-21.

Costa, R.F.R.; Santos, I.F.; Santana, A.P.; Tortelly, R.N.; Elmiro, R.F.; Rubens, T.C.; Eulógio, C.Q.; Menezes, R.C. 2012. Caracterização das lesões por Cysticercus bovis, na inspeção post mortem de bovinos, pelos exames macroscópio, histopatológico e pela reação em cadeia da polimerase (PCR). Pesquisa Veterinária Brasileira, 32(6): 477-484.

Ellman, G.L. 1959.Tissue sulfhydryl groups. Archives of Biochemistry and Biophysics, 82(1): 70-77. https://doi.org/10.1016/0003-9861(59)90090-6.

FAO - Food and Agriculture Organization of the United Nations. 2018. The State of World Fisheries and Aquaculture. Rome, 210p.

Fracalossi, D.M.; Meyer, G.; Santamaria, F.M.; Weingartner, M.; Filho, E.Z. 2004. Desempenho do jundiá, Rhamdia quelen, e do dourado, Salminus brasiliensis, em viveiros de terra na região sul do Brasil. Acta Scientiarum Animal Sciences, 26(3): 345-352. http://dx.doi.org/10.4025/actascianimsci.v26i3.1806.

Gomes, L.C.; Chippari-Gomes, A.R.; Lopes, N.P.; Roubach, R.; Araujo-Lima, C.A.R.M. 2001. Efficacy benzocaine as anesthetic in Juvenile tambaqui Colossoma macropomum. Journal of the World Aquaculture Society, 32(4): 426-431. https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.2001.tb00470.x.

Haliloǧlu, H.İ.; Bayir, A.; Sirkecioǧlu, A.N.; Aras N.M.; Atamanalp, M. 2004. Comparison of fatty acid composition in some tissues of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) living in seawater and freshwater. Food Chemistry, 86(1): 55-59. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2003.08.028.

IBGE, 2016. Instituto Brasileiro de Geografia e Estatí­­stica. 2016. Produção da Pecuária Municipal. Brasil, 53p.

Lehninger, A.L.; Nelson, D.L.; Cox, M.M. 2011. Princí­­pios de Bioquí­­mica. 3. Ed. São Paulo: Sarvier. 975p.

Leonard, A.E.; Pereira, S.L.; Sprecher, H.; Huang, Y.S. 2004. Elongation of long-chain fatty acids. Progress in lipid research, 43(1): 36-54. http://doi:10.1016/S0163-7827(03)00040-7.

Li, M.H.; Minchew, C.D.; Oberle, D.F.; Robinson, E.H. 2010. Evaluation of glycerol from biodiesel production as a feed ingredient for channel catfish, Ictalurus punctatus. Journal of the World Aquaculture Society, 41: 130í 136. https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.2009.00320.x.

Li, J.Y.; Zhang, D.D.; Xu, W.N.; Jiang, G.Z.; Zhang, C.N.; Li, X.F.; Liu, W.B. 2014. Effects of dietary choline supplementation on growth performance and hepatic lipid transport in blunt snout bream (Megalobrama amblycephala) fed high-fat diets. Aquaculture, 434: 340-347. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.08.006.

Losekann, M.E.; Radünz, N.J.; Emanuelli, T.; Araújo, P.F.; Lazzari. R.; Taffarel Bergamin, G.; Simões, R.S. 2008. Alimentação do jundiá com dietas contendo óleos de arroz, canola ou soja. Ciência Rural, 38(1): 225-230. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-4782008000100036.

Lui, T.A.; Freitas, J.M.A.; Bittencourt, F.; Dallagnol, J.M.;Neu, D.H.; Boscolo, W.R. 2017. Índice de acidez do óleo de peixe na nutrição de alevinos de tilápia. Revista Agrarian, 11(40): 174-180. https://doi.org/10.30612/agrarian.v11i40.6702.

Martino, R.C.; Cyrino, J.E.P.; Portz, L.; Trugo, L.C. 2002. Performance fatty acid composition of surubum (Pseudoplatystoma coruscans) fed diets with animal and plant lipid. Aquaculture, 209: 233-246. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00847-x.

Menoyo, D.; Lopez-Bote, C.J.; Bautista, J.M.; Obach, A. 2003. Growth, digestibility and fatty acid utilization in large Atlantic salmon (Salmo salar) fed varying levels of n-3 and saturated fatty acids. Aquaculture, 225(1-4): 295-307. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(03)00297-7.

Meurer, F.; Hayashi, C.; Boscolo, W.R.; Soares, C.M. 2002. Lipí­­deos na alimentação de alevinos revertidos de tilápia do Nilo (Oreochromis niloticus L.). Revista Brasileira de Zootecnia, 31: 566-573. http://dx.doi.org/10.1590/S1516-35982002000300005.

Meyer, G.; Fracalossi, D.M. 2004.Protein requirement of jundia fingerlings, Rhamdia quelen, at two dietary energy concentrations. Aquaculture, 240(1): 331-343. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2004.01.034.

Motta, V.T. 2011 Bioquí­­mica Básica. 2ª Edição, Rio de Janeiro. ED. Medbook.

Moura, G.S.; Oliveira, M.G.A.; Lanna, E.A.T. 2012. Effects of enzyme complex SSF (solid state fermentation) in pellet diets for Nile tilapia. Revista Brasileira de Zootecnia, 41(10): 2139-2143. http://dx.doi.org/10.1590/S1516-35982012001000001.

NRC- National Research Council. 2011. Nutrient requirements of fish and shrimp. Washington, D.C.: National Academy Press. 376p.

Nelson, D.L.; Cox, M.M. 2005. Lehninger Principles of Biochemistry, 4ª edição, W. H. Freeman.

Nelson, D.P.; Kiesow, L.A. 1972. Enthalpy of decomposition of hydrogen peroxide by catalase at 25 degrees C (with molar extinction coefficients of H2O2 solutions in the UV). Analytical Biochemistry, 49: 474-478. https://doi.org/10.1016/0003-2697(72)90451-4.

Neu, D.H.; Furuya, W.M.; Boscolo, W.R.; Potrich,F.R.; LUI, T.A.; Feiden, A. 2013. Glycerol inclusion in the diet of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) juveniles. Aquaculture Nutrition, 19: 211-217. https://doi.org/10.1111/j.1365-2095.2012.00968.x.

Ng, W.K.; Chong, C.Y.; Wang, Y.; Romano, N. 2013. Effects of fietary fish and vegetable oil on the growth, tissue fatty acid composition, oxidative stability and vitamin E content of red hybrid tilapia and efficacy of using fish oil finishing diets. Aquaculture, 372-375: 97-110. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2012.10.030.

Parra, J.E.G.; Radünz Neto, J.; Veiverberg, C.A.;Lazzari, R.; Bergamin, G.T.; Pedron, F.A.; Rossato, S.; Sutili, F. 2008.Alimentação de fêmeas de jundiá com fontes lipí­­dicas e sua relação com o desenvolvimento embrionário e larval. Ciência Rural, 38(7): 2011í 2017. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782008000700033.

Pereira, M.C.; Azevedo, R.V.T.; Braga, L.G.T. 2011. Óleos vegetais em rações para o hí­­brido tambacu (macho Piaractus mesopotamicus x fêmea Colossoma macropomum). Revista Brasileira de Saúde e Produção Animal, 12(2): 551-562.

Rezende, K.F.O.; Bergami, E.; Alves, K.V.B.; Corsi, I.; Barbieri, E. 2018. Titanium dioxide nanoparticles alter routine metabolism and cause histopathological alterations in Oreochromis niloticus. Boletim do Instituto de Pesca, 44(2): e343.

Salbego, J.; TONI, C.; Becker, A.G.; Zeppenfeld, C.C.; Menezes, C.C.; Loro, V.L; Heinzmann, B.M.; Baldisserotto, B. 2017. Biochemical parameters of silver catfish (Rhamdia quelen) after transport with eugenol or essential oil of Lippia alba added to the water. Brazilian Journal of Biology, 77(4): 696-702. http://dx.doi.org/10.1590/1519-6984.16515.

Sargent, J.R.; Tocher, D.R.; Bell, J.G. 2002. The lipidis. In: Halver, J. E. Fish Nutrition. Acadêmico Inc. Press, San Diego, CA, EUA. pp 181-257.

Satake, F.; Ishikawa, M.M.; Hisano, H.; Pádua, S.B., Tavares-Dias, M. 2009. Relação peso-comprimento, fator de condição e parí­¢metros hematológicos de dourado Salminus brasiliensis cultivado em condições experimentais. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento. Dourados: Embrapa. 24p.

Shiau, S.Y. 2002. Tilapia, Oreochromis spp. In: C.D. Webster & C.E. (ed). Nutrient Requeriments and feeding of finfish for aquaculture. Offordshire: CABI Publishing. pp 273-292.

Soldatov, A.A. 2005. Peculiarities of organization and functioning of the fish red blood system. Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology, 41(3): 272-281.

Tavares-Dias, M.; Moraes, F.R. 2010. Biochemical parameters for Piaractus mesopotamicus, Colossoma macropomum (Characidae) and hybrid tambacu (P. mesopotamicus X C. macropomum). Ciência Animal Brasileira, 11(2): 363-368.

Wilson, R.P. 2002. Amino acids protein. In: Halver JE (ed). Fish Nutrition. London: Academic Press. pp 8-24.

Zelikoff, J.T. 1998. Biomarkers of immunotoxicitity in fish and other non-mammalian sentinel species: productive value for mammals? Toxicology, 129: 63-71.

Downloads

Publicado

2019-03-26

Edição

Seção

Artigo cientí­fico

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)