FAUNA PARASITÁRIA DE TAMBAQUIS CULTIVADOS EM TANQUES-REDE E EM DUAS DENSIDADES DE ESTOCAGEM
DOI:
https://doi.org/10.20950/1678-2305.2019.45.3.492Palavras-chave:
agregação, Amazônia, piscicultura, parasitosResumo
Este estudo investigou os parasitos de Colossoma macropomum cultivados em duas diferentes densidades de estocagem em tanques-rede instalados no Rio Matapi, estado do Amapá. Antes da estocagem dos peixes nos tanques-rede para engorda, peixes foram examinados para parasitos e também ao final de 90 e 180 dias nas densidades 50 e 100 peixes m-3, respectivamente. Todos os peixes foram parasitados por uma ou mais espécies entre Ichthyophthirius multifiliis, Piscinoodinium pillulare, Anacanthorus spathulatus, Mymarothecium boegeri, Notozothecium janauachensis, Procamallanus (Spirocamallanus) inopinatus e Acarina gen. sp., mas a dominí¢ncia foi de I. multifiliis. Os parasitos apresentaram padrão de dispersão agregada e não houve diferenças no fator de condição relativa dos peixes entre as densidades usadas. Houve correlação positiva da abundí¢ncia de I. multifiliis e abundí¢ncia de monogeneas com o comprimento e peso dos hospedeiros. Antes da estocagem dos peixes, foi menor intensidade média e abundí¢ncia média de I. multifiliis, A. spathulatus, M. boegeri quando comparados os peixes das densidades de 50 e 100 peixes m-3, os quais foram similares entre si. A intensidade média e abundí¢ncia média de N. janauachensis foi maior na densidade de 50 peixes m-3 quando comparando os peixes antes da estocagem e 100 peixes m-3. A abundí¢ncia média de P. (S.) inopinatus foi maior em peixes mantidos em 100 peixes m-3, quando comparados os peixes antes da estocagem e 50 peixes m-3. Porém, P. pillulare e ácaros ocorreram somente na densidade de 50 peixes m-3. Houve uma predominí¢ncia de ectoparasitos e poucos endoparasitos, como esperado. Portanto, é necessário o monitoramento constante dos parasitos, para melhor implementar estratégias de controle que visem evitar a ocorrência de doenças.
Referências
Baia, R.R.J; Florentino, A.C.; Silva, L.M.A.; Tavares-Dias, M. 2018. Patterns of the parasite communities in a fish assemblage of a river in the Brazilian Amazon region. Acta Parasitologica, 63(2):304í 316.
https://doi.org/10.1515/ap-2018-0035
Beveridge, M.C.M. 1996. Cage aquaculture. Oxford: Fishing News Books. 346p.
Brandão, F.R.; Gomes, L.C.; Chagas, E.C.; Araújo, L.R. 2004. Densidade de estocagem de juvenis de tambaqui durante a recria em tanquesrede. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 39(4): 357-362. http://dx.doi.
org/10.1590/S0100-204X2004000400009.
Bush, A.O.; Lafferty, K.D.; Lotz, J.M.; Shostak, W. 1997. Parasitology meets ecology on its own terms: Margolis et al. revisited. The Journal of Parasitology, 83: 575-583.
Chagas, E.C.; Lourenço, J.N.P.; Gomes, L.C.; Val, A. L. 2003. Desempenho e estado de saúde de tambaquis cultivados em tanques-rede sob diferentes densidades de estocagem. In: Urbinati, E.C.; Cyrino, J.E.P. (eds). XII Simpósio Brasileiro de Aquicultura. Jaboticabal, SP: Aquabio. p. 83í 93.
Chagas, E.C., Gomes, L.C.; Martins Júnior, H.; Roubach, R. 2007. Produtividade de tambaqui criado em tanque-rede com diferentes taxas de alimentação. Ciência Rural, 37(4): 1109í 1115. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782007000400031.
Costa, O.T.F.; Dias, L.C.; Malmann, C.S.Y.; Ferreira, C.A.L.; Carmo, I.C.; Wischneski, A.G.; Souza, R.L.; Cavaiero, B.A.S.; Lameiras, J.L.V.; Santos, M.C. 2019.The effects of stocking density on the hematology, plasma protein profileand immunoglobulin production of juvenile tambaqui (Colossoma macropomum) farmed in Brazil. Aquaculture, 499: 260í 268. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.09.040
Eiras, J.C.; Takemoto, R.M.; Pavanelli, G.C. 2006. Métodos de estudo e técnicas laboratoriais em parasitologia de peixes. 2a ed. Maringá: Eduem. 199p.
FAO í Food and Agriculture Organization of the United Nations. 2018. The State of World Fisheries and Aquaculture: meeting the sustainable development goals. Rome:FAO. 210p.
Fernandez-Jover, D.; Faliex, E.; Sanchez-Jerez, P.; Sasal, P.; Bayle-Sempere, J.T. 2010. Coastal fish farming does not affect the total parasite communities of wild fish in SW Mediterranean. Aquaculture, 300:10í 16. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2009.12.006
Gomes, L.C.; Chagas, E.C.; Martins-Junior, H.; Roubach, R.; Ono, E.A.; Lourenço, J.N.P. 2006. Cage culture of tambaqui (Colossoma macropomum) in a central Amazon floodplain lake. Aquaculture, 253:374í 384. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.08.020
Gomes, L.C.; Simões, L.N.; Araújo-Lima, C. A. R. M. 2010. Tambaqui (Colossoma macropomum). In: Baldisseroto, B.; Gomes, L.C. Espécies nativas para piscicultura no Brasil. 2a ed. Editora UFSM, Santa Maria. p. 175-204.
IBGE - Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística. Pesquisa da pecuária Municipal. GEPEC/COAGRO, Rio de Janeiro, 2018.
Le Cren, E.D. 1951. The length-weight relationship and seasonal cycle in gonad weight and condition in the perch (Perca fluviatilis). Journal of Animal Ecology, 20: 201-219. https://doi.org/10.2307/1540
Ludwig, J.; Reynolds, J.F. 1988. Statistical ecology: a primer on methods and computing. New York: Wiley-Interscience. 337p.
Merella, P.; Cherchi, S.; Garippa, G.; Fioravanti, M.L.; Gustinelli, A.; Salti, F. 2009. Outbreak of Sciaenacotyle panceri (Monogenea) on cagereared meagre Argyrosomus regius (Osteichthyes) from the western Mediterranean Sea. Diseases of Aquatic Organisms, 86: 169í 173. https://doi.org/10.3354/dao02115.
Mladineo, I. 2006. Parasites of Adriatic cage reared fish. Acta Adriatica, 47(1): 23-28.
Morales-Serna, F.N.; Chapa-López, M.; Martínez-Brown, J.M.; IbarraCastro, L.; Medina-Guerrero, R.M.; Fajer-Ávila, E. J. 2018. Efficacy of praziquantel and a combination anthelmintic (Adecto®) in bath treatments against Tagia ecuadori and Neobenedenia melleni (Monogenea), parasites of bullseye puffer fish. Aquaculture, 492: 361-368. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.04.043
Nowak, B.F. 2007. Parasitic diseases in marine cage culture: an example of experimental evolution of parasites? International Journal for Parasitology, 37: 581-588. https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2007.01.003
Poulin, R.; Leung, TLF. 2011. Body size, trophic level, and the use of fish as transmission routes by parasites. Oecologia, 166: 731-738. https://doi.org/10.1007/s00442-011-1906-3.
Ritter, F., A. Pandolfo, L. J. G. Barcellos, V. R.S.; Ritter, L. M.; Pandolfo, L. D.; Tagliari; N. Barbacovi, E. 2014. Utilização do método monte Carlo para avaliação econômica de policultivos de jundiás, carpas e tilápias-do-nilo como uma alternativa de modelo de cultivo de peixes para pequenas propriedades. Produção Online, 14: 1292-1315.
Roubach, R.; Correia, E.S.; Zaiden, S.; Martino, R.C.; Cavalli, R.O. 2003. Aquaculture in Brazil. World Aquaculture, 34(1): 28-34: 70-71.
Rózsa, L.; Reiczigel, J.; Majoros, G. 2000. Quantifying parasites in samples of hosts. The Journal of Parasitology, 86: 228-232. https://doi.org/10.1645/0022-3395(2000)086[0228:QPISOH]2.0.CO;2
Santos, E. F.; Tavares-Dias, M.; Pinheiro, D.A.; Neves, L.R.; Marinho, RG.B., Dias, M.K.R. 2013. Fauna parasitária de tambaqui Colossoma macropomum (Characidae) cultivado em tanque-rede no estado do Amapá, Amazônia oriental. Acta Amazonica, 43: 107í 114. http://dx.doi.org/10.1590/S0044-59672013000100013
Silva, C.A.; Fujimoto, R.Y. 2015. Crescimento de tambaqui em resposta a densidade de estocagem em tanques-rede. Acta Amazonica, 45(3):323-332. http://dx.doi.org/ 10.1590/1809-4392201402205
Tavares-Dias, M.; Martins, M.L. 2017. An overall estimation of losses caused by diseases in the Brazilian fish farms. Journal of Parasitic Diseases, 41: 913-918. https://doi.org/10.1007/s12639-017-0938-y
Varella, M.B.A., Peiro, S.N.; Malta, J.C.O. 2003. Monitoramento da parasitofauna de Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) (Osteichthyes: Characidae) cultivado em tanques rede em um lago de várzea na Amazônia. In: Urbinati, E.C.; Cyrino, J.E.P. Aquabio. XII Simpósio Brasileiro de Aquicultura, 2: 95í 105.
Wang, Q.; Yu,Y.; Zhang, X.; Xu, Z. 2019. Immune responses of fish to Ichthyophthirius multifiliis (Ich): a model for understanding immunity against protozoan parasites. Developmental and Comparative Immunology, 93: 93í 102. https://doi.org/10.1016/ j.dci.2019.01.002
Wei, J.Z; Li, H.; Yu, H. 2013. Ichthyophthiriasis: emphases on the epizootiology. Letters in Applied Microbiology, 57: 91-101. https://doi.org/10.1111/lam.12079
Zar, J. H. 2010. Biostatistical analysis. Prentice-Hall, New Jersey. 944p
