Ação de diferentes indutores reprodutivos hormonais no aparecimento de anormalidades morfológicas em espermatozóides de piavuçu (Leporinus macrocephalus), curimbatá (Prochilodus lineatus) e carpa comum (Cyprinus carpio)
Palavras-chave:
extrato de hipófise, anormalidade em espermatozoide, peixe, piscicultura, sêmenResumo
Foram avaliados os espermatozoides de 27 carpas comuns (Cyprinus carpio), 55 piavuçus (Leporinus macrocephalus) e 48 curimbatás (Prochilodus lineatus) induzidos í reprodução com extrato de hipófise de carpa (EHC), frango (EHF) e coelho (EHCo). Esfregaços foram produzidos e corados pelo método Rosa Bengala, para avaliar 200 a 230 espermatozoides de cada peixe. Em C. carpio e P. lineatus não houve diferença (P > 0,05) entre os tratamentos (EHC, EHF e EHCo) quanto ao número de espermatozoides normais. Entretanto, em L. macrocephalus induzido com EHCo, o número de espermatozoides normais (31,2%) foi menor (P < 0,05) em relação í quele dos peixes induzidos com EHC (51%) e EHF (46,5%). A incidência de espermatozoides com anormalidade primária foi de 13,8; 10,3 e 15,2% em C. carpio, de 12,5; 9,5 e 8,2% em L. macrocephalus e 14,3; 15 e 15,1% em P. lineatus, nos tratamentos com EHC, EHF e EHCo respectivamente, não existindo diferença entre esses valores (P > 0,05). Em L. macrocephalus, o número de espermatozoides com anormalidade secundária foi bem elevado nos animais induzidos com EHCo (P < 0,05). Já em C. carpio, espermatozoides com anormalidade secundária foram pouco mais frequentes (P < 0,05) nos exemplares induzidos com EHCo (32,7%), em relação aos induzidos com EHC (23,6%). Em P. lineatus não houve diferença (P < 0,05) entre as ocorrências de espermatozoides com anormalidade secundária nos diferentes tratamentos. Em C. carpio, L. macrocephalus e P. Lineatus, induzidos com EHC, EHF e EHCo, as anormalidades mais frequentes foram cabeça solta e cauda solta. Pelos resultados obtidos, o EHCo não seria indicado para induzir a reprodução de machos de L. macrocephalus, apesar de não existirem informações para interpretar o aparecimento de anormalidade em espermatozoides de peixes.
Referências
ANNUAL REPORT ON THE UNITED STATES SEAFOOD INDUSTRY í ARRUSI 2000 Report. [S.1.: s.n.], 2000. Disponível em: http://www.wordcatch.com Acesso em: 2002.
BARTH, A.D. e OKO, R.J. 1989 Abnormal morphology of bovine spermatozoa. Ames: Iowa State University Press. 285p
BRITSKI, H.A. 1999 Peixes do Pantanal. Manual de identificação. Brasília: Embrapa í SPI. 184p.
BROMAGE, N. 1995 Broodstock management and seed quality-General considerations. In:BROMAGE, N. e ROBERTS, R.J. (Ed.). Broodstock management and egg larval quality. Oxford:Blackwell Science. p.1-24.
CASTAGNOLLI, N. 1992 Espécies exóticas próprias para a piscicultura. In: _____. Piscicultura de água doce. Jaboticabal: FUNEP. p.71-96.
CECCARELLI, P.S.; SENHORINI, J.A.; VOLPATO, G.P. 2000 Dicas em piscicultura; perguntas e respostas. Botucatu: Santina Gráfica Editora. 247p.
COLÉGIO BRASILEIRO DE REPRODUÇÃO ANIMAL - CBRA 1998 Manual para exame andrológico e avaliação do sêmen animal. 2. ed. Belo Horizonte: CBRA. 49p.
DONALDSON, E.M.; SOLAR, I.I.; HARVEY, B. 2000 Induced ovulation and spermiation and factors influencing gamete quality of fishes. In: TIERSCH, T.R. e MAZIK, P.M. (Ed.). Cryopreservation in aquatic species. Baton Rouge:
World Aquaculture Society. p.13-19.
HAFEZ, E.S.E. e HAFEZ, B. 2000 Reproduction in farm animals. 7. ed. Philadelphia: Lippicott Williams e Wickins. 509p.
HARVEY, B. e CAROLSFELD, J. 1993 Induced breeding in tropical fish culture. Ottawa: IDRC.144p.
HERMAN, H.A.; MITCHELL, J.R.; DOAK, G.A. 1994 The artificial insemination and embryo transfer of diary and beef cattle. 8. ed. Illinois: Interstate Publishers Inc. 392p
KAVAMOTO, E.T.; BARNABE, V.H.; CAMPOS, B.E.S.de; ANDRADE-TALMELLI, E.F. de 1999 Anormalidades morfológicas nos espermatozóides do curimbatá, Prochilodus lineatus (Steindachner, 1881) (Osteichthyes, Characiformes, Prochilodontidae). B. Inst. Pesca, São Paulo, 25(único): 61-66.
LIN, H. R. e PETER, R.E. 1991 Aquaculture. In: WINFELD, I.J. e NELSON, J.S. (Ed.). Cyprinid Fishes. Systematics, biology and exploitation.Sulfolk: St. Edmundshury Press. p.603í 622.
MANSOUR, N.; LAHNSTEINER, F.; PATZNER, R.A. 2002 The spermatozoon of the African catfish: fine structure, motility, viability and its behavior in seminal vesicle secretion. J. Fish Biol., 60(3):545-560.
SAS Institute Inc. 1992 SAS technical report. Release 6.07. Cary: NC. 229p.
TADDEI, A.R.; BARBATO, F.; ABELLI, L.; CANESE,S.; MORETTI, F.; RANA, K.J.; FAUSTO, A.M.; MAZZINI, M. 2001 Is cryopreservation a homogeneous process? Ultrastructure and motility of untreated, prefreezing, and postthawed spermatozoa of Diplodus puntazzo (Cetti).Cryobiology, 42(4): 244-255.
VALE FILHO, V.R. 1980 Patologia do sêmen. 2. ed. Belo Horizonte: Universidade Federal de Minas Gerais í Escola de Veterinária. 54p.
YAO, Z.; CRIM, L.W.; RICHARDSON, G.F.;EMERSON, C.J. 2000 Motility, fertility and ultrastructural changes of ocean pout (Macrozoarces americanus L.) sperm after cryopreservation. Aquaculture, 181(3): 361-375.
WOYNAROVICH, E. e HORVÁTH, L. 1983 A propagação artificial de peixes de águas tropicais:manual de extensão. Brasília: Escopo. 220p
