Uso de hidróxido de cálcio no controle de vibrionáceas em viveiros de cultivo do camarão Litopenaeus vannamei em Santa Catarina

Autores

  • José Luiz Pedreira Mouriño Laboratório de Camarí­µes Marinhos (LCM), CCA, Universidade Federal de Santa Catarina http://orcid.org/0000-0002-8619-0882
  • Celso Carlos Buglione Neto Graduando em Engenharia de Aq-­¼icultura, CCA, Universidade Federal de Santa Catarina
  • Felipe do Nascimento Vieira Mestrando em Aq-­¼icultura, Universidade Federal de Santa Catarina
  • Cristina Ramirez Universidad Del Valle, Calle 13, no 100-00, Cali, Colombia
  • Walter Quadros Seiffert Laboratório de Camarí­µes Marinhos (LCM), CCA, Universidade Federal de Santa Catarina
  • Maurício laterça Martins Laboratório de diagnóstico e Patologia Aquática, CCA, Universidade Federal de Santa Catarina http://orcid.org/0000-0002-0862-6927
  • Fabiola Santiago Pedrotti Graduando em Engenharia de Aq-­¼icultura, CCA, Universidade Federal de Santa Catarina http://orcid.org/0000-0002-8467-8630
  • Rodrigo Schveitzer Laboratório de Camarí­µes Marinhos (LCM), CCA, Universidade Federal de Santa Catarina http://orcid.org/0000-0002-5660-3930

Palavras-chave:

Vibrio, Litopenaeus vannamei, hidróxido de cálcio

Resumo

As doenças de origem bacteriana, principalmente aquelas causadas por organismos do gênero Vibrio, são responsáveis por perdas econômicas significativas na indústria de camarões. Este trabalho objetivou determinar a concentração de hidróxido de cálcio [Ca(OH)2] capaz de inibir in vitro o crescimento de Vibrio harveyi, e testar in vivo sua utilização em viveiros de cultivo. Para o experimento in vitro utilizaram-se frascos com meio de cultura BHI (Brain Heart Infusion), o qual foi suplementado com Ca(OH)2 em quatro diferentes concentrações: 0; 0,018 g/L; 0,025 g/L; 0,036 g/L, inoculado com 1,2 x 1011 unidades formadoras de colônias (UFC)/mL e incubado por 24 h com agitação contí­­nua. Nos quatro tratamentos, o crescimento bacteriano foi estimado por contagem total de colônias em placas, pelo método de diluições sucessivas (1/10). Para o experimento em viveiros utilizou-se Ca(OH)2 na concentração de 0,018 g/L, adicionado de forma fracionada durante três dias de cultivo. A concentração de bactérias totais em meio de cultura Agar Marine e de vibriões em meio de cultura TCBS (Thiosulphate-Citrate-Bile Salts-Sucrose) foi avaliada por contagem total de colônias em placas, antes e 48 h após a aplicação do hidróxido de cálcio. Após a aplicação do hidróxido de cálcio, a concentração de vibriões diminuiu (p < 0,05) de 4,36 ± 0,1 (log UFC/mL ± DP) para 3,07 ± 0,36 (log UFC/mL ± DP), não sendo, porém, observado decréscimo significativo da concentração de bactérias totais. Desta forma, evidenciou-se que Ca(OH)2 pode ser utilizado no controle de vibrioses em sistemas de cultivo.

Referências

ABRAHAM, T.J.e PALANIAPPAN, R. 2004 Distribution of luminous bacteria in semi-intensive penaeid shrimp hatcheries of Tamil Nadu, India.Aquaculture, Amsterdam, 232(4): 81-90.

CHINABUT, S. 1994 EUS in Thailand. In: ROBERTS,R.J.; CAMPBELL, B.; MACREA, I.H. (Ed.).Proceedings of the ODA Regional Seminar on Epizootic Ulcerative Syndrome. Bangkok. p.58-60.

ESTRELA, C.; SYDNEY, G.B.; BAMMANN, L.; FELIPE,O. 1995 Mechanism of the action of calcium and hydroxyl ions of calcium hydroxide on tissue and bacteria. Brazilian Dental Journal, Ribeirão Preto,6(2): 85-90.

ESTRELA, C.; BAMMANN, L.L.; PIMENTA, F.C.;PÉCORA, J.D. 2001 Control of microorganisms in vitro by calcium hydroxide pastes. International Endodontic Journal, London, 34(5): 341-345.

FAIRWEATHER, D.J. 1999 Development of a bath challenge system to study component causes, and preventive treatments, of epizootic ulcerative syndrome (eus) in snakehead fish (Channa striata). Plymouth.
88p. (Dissertação de Mestrado. Universidade de Plymouth).

HOLMSTRí­–M, K.; GRASLUND, S.; WAHLSTROM,A.; POUNGSHOMPOO, S.; BENGTSSON, B.E.; KAUTSKY, N. 2003 Antibiotic use in shrimp farming and implications for environmental impacts and human health. International Journal of Food Science and Technology, Oxford, 38(3):255-266.

LIGHTNER, D.V. e REDMAN, R.M. 1998 Shrimp diseases and current diagnostic methods. Aquaculture, Amsterdam, 164(4): 201-220.

PASHLEY, D., KALATHOOR, S., BURNHAM, D 1986 The effects of calcium hydroxide on dentin permeability. Journal of Dental Research, 65(3):417-420. RUANGPAN, L.; DANAYADOL, Y.; DIREKBUSARAKOM, S.; SIURAIRATANA, S.; FLEGEL, T. 1999 Lethal toxicity of Vibrio harveyi to cultivated Penaeus monodon induced by a bacteriophage. Diseases of Aquatic Organisms,Oldendorff, 35: 195-201.

SAFAVI, K. e NICHOLS, F.C. 1994 Alteration of biological properties of bacterial lipopolysaccharide by calcium hydroxide treatment. Journal of Endodontics, Baltimore, 20(3): 127-129.

SEUX, D.; COUBLE, M.L.; HARTMANN, D.J.;GAUTHIER, J.P.; MAGLOIRE, H. 1991 Odontoblast like cytodifferentiation of human pulp cells in vitro in the presence of a calcium hydroxide contamining cement. Archives of Oral Biology, 36(2): 117-128.

SKJERMO, J. e VADSTEIN, O. 1999 Techniques for microbial control in the intensive rearing of marine larvae. Aquaculture, Amsterdam, 177(1-4):333-343.

SONG, Y.L.; CHENG, W.; WANG, C.H. 1993 Isolation and characterization of Vibrio damsela infections for
cultured shrimp in Taiwan. Journal of Invertebrate Pathology, Nova York, 61(1): 24-31.

VINATEA, L. 2004 Princí­­pios quí­­micos de qualidade da água em aqüicultura: uma revisão para peixes e camarões.
2. ed. Florianópolis: Editora da UFSC. 231p.

WAKABAYASHI, H.; HORIKAWA, M.; FUNATO,A.; ONODERA, A.; MATSUMOTO, K. 1993 Bio-microscopical observation of dystrophic calcification induced by calcium hydroxide. Endodontics and Dental Traumatology, Copenhagen,9(4): 105-111.

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Publicado

2018-11-01

Edição

v. 34 n. 1 (2008): BOLETIM DO INSTITUTO DE PESCA

Seção

Nota cientí­­fica (Short Communication)

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